I. INTRODUCCIÓN
En condiciones normales, los glóbulos rojos en reposo se agregan en estructuras similares a pilas de monedas llama-
das rouleaux, pero en determinadas patologías, como por ejemplo la diabetes, forman aglomerados globulares llamados
clusters [1],[2]. Para simular in vitro las alteraciones que la hiperglucemia produce en pacientes diabéticos, se realizan in-
cubaciones de glóbulos rojos humanos en medios con diferentes concentraciones de glucosa. Además, mediante estudios
hemorreológicos es posible evaluar si determinados compuestos podrían revertir estas alteraciones a fin de utilizarlos para
el tratamiento de la diabetes [3],[4],[5].
En este tipo de estudios hemorreológicos se suelen utilizar imágenes digitales correspondientes a glóbulos rojos de
donantes sanos que fueron incubados con soluciones de glucosa (glicados in vitro) y luego tratados con el compuesto
en estudio, por ejemplo fitoquímicos (Trigonelina, quercetina, beta-sitosterol) o extractos de plantas nativas (Phyllanthus
sellowianus yBauhinia forficata) utilizadas para el tratamiento de la diabetes [6]. Por lo tanto, se necesita procesar
una gran cantidad de imágenes digitales de glóbulos rojos de dadores sanos, tratadas con los fitoquímicos e incubadas
en medios con distintas concentraciones de glucosa [7]. El protocolo con estas imágenes incluye la determinación de
los porcentajes de células aisladas (CA) y parámetros de agregación [8], [9]. En particular, se utiliza frecuentemente el
coeficiente de células aisladas definido de la siguiente manera:
CCA =
CAinicial −CAfinal
CAinicial (1)
Este coeficiente puede variar entre 0 y 1; siendo CCA =0 cuando no hay diferencias en la agregación antes y después del
tratamiento, y CCA =1 cuando hay agregación completa después del tratamiento. De esta forma, el valor de CCA cuantifica
la variación de la agregación de la muestra tratada relativa al control.
El objetivo de este trabajo fue optimizar el proceso de obtención de estos parámetros reduciendo el tiempo de trabajo
por imagen por parte del operador, mediante el desarrollo de un programa adecuado para el análisis de las microfotografías
de glóbulos rojos (GR) incubados con soluciones del fitoquímico quercetina.
II. MATERIALES Y MÉTODOS
Material biológico
Se utilizaron muestras de sangre de dadores sanos obtenidas por punción venosa y anticoaguladas con EDTA. Los GR
fueron separados por centrifugación y lavados una vez en PBS (solución buffer fosfato, pH 7.4 y osmolaridad 300 mOsm)
para su posterior tratamiento.
Tratamiento de las células
Se utilizó quercetina adquirida de Laboratorio Sigma Aldrich (código117-39-5). Se prepararon soluciones de querceti-
na en PBS a distintas concentraciones (0,1; 1; 10 y 100 µM), las cuales fueron elegidas teniendo en cuenta las utilizadas
en diversos estudios de investigación y su solubilidad en agua (ensayos previos demostraron que a concentraciones su-
periores a 100 µMes poco soluble en agua). En esta publicación se describen los efectos obtenidos en función de las
concentraciones de quercetina utilizadas:
Bajas dosis 0 a 10 µM: quimioprevención.
Dosis medias 10 a 200 µM: efectos mixtos.
Dosis altas >200 µM: pro-oxidante o potenciales propiedades terapéuticas.
Volúmenes iguales de GR lavados y de cada solución de quercetina fueron mezclados e incubados a 37°C durante 2
horas con agitación controlada. Luego los GR fueron lavados nuevamente con PBS y resuspendidos en plasma autólogo
al 0,3% para su observación y toma de imágenes por quintuplicado en el microscopio.
Método
Se desarrolló una GUI (Graphic User Interface) en Python para sistematizar el análisis de imágenes digitales tomadas
con una cámara acoplada a un microscopio invertido y objetivo 40x. El programa desarrollado permite aplicarles un
balance de blancos para mejorar el contraste células-fondo y realizar el conteo de las células totales (incluidas aquellas
que no se encuentran aisladas, sino formando rouleaux). Además, se diseñó una interfaz on-click para facilitar el manejo
del programa a operarios no familiarizados con recursos informáticos.
Los criterios de usabilidad de la GUI basada en la librería TkInter están dirigidos a usuarios no expertos. Los algoritmos
de procesamiento de imágenes están contenidos en la biblioteca OpenCV2, que utiliza las redes neuronales previamente
entrenadas por la empresa INTEL (https://opencv.org/).
III. RESULTADOS
En la Fig. 1se muestra un ejemplo de una de las imágenes originales obtenidas para los GR incubados con quercetina.
La interfaz desarrollada permite utilizar imágenes digitalizadas de forma práctica e incluso remota.
Gangui et al. / Anales AFA Vol. 35 Nro. 4 (Diciembre 2024 - Marzo 2025) 103 - 106 104